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他mo昔芬（Tamoxifen）诱导系统
时间可控性强，避免胚胎期致死问题；
高灵敏度版本（如Cre-ERT2）对4-OHT的敏感性提升10倍。
原理：将Cre重组酶与突变型雌激素受体（ER-LBD）融合形成Cre-ER(Tam)融合蛋白。未给药时，该蛋白与热休克蛋白（HSP90）结合并滞留于细胞质；给药后，他mo昔芬与ER结合，释放Cre进入细胞核，介导loxP位点间的重组。
优势：
四环素诱导系统（Tet-On/Tet-Off）
Tet-Off系统：无需四环素时，tTA蛋白激活Cre表达；给予多xi环素（Dox）则抑制Cre活性，适用于持续敲除场景。
Tet-On系统：需Dox激活rtTA蛋白才能启动Cre表达，适用于短期诱导。
应用：常用于发育阶段特异性基因功能研究，如肺上皮细胞基因敲除。
干扰素诱导系统（Mx1-Cre）
通过注射polyI:C或干扰素诱导Cre表达，适用于免疫细胞或肝脏等干扰素响应组织的研究。
构建Flox小鼠：在目标基因两侧插入loxP序列，确保基因正常功能不受影响。
选择Cre工具鼠：根据实验需求选择组织特异性或药物诱导型Cre品系（如Alb-CreERT2用于肝脏特异性敲除）。
药物处理：
他mo昔芬：成年小鼠连续5天腹腔注射（75-100 mg/kg），溶解于玉米油或葵花籽油。
多xi环素：通过含药饲料（600 mg/kg）连续喂养14天。
表型分析与验证：通过PCR、Western blot或荧光报告系统确认敲除效率。
疾病模型构建：如肿瘤研究中诱导性敲除致癌基因，观察肿瘤发生动态。
发育生物学：研究特定发育阶段（如胚胎期或成年期）基因功能。
组织特异性研究：结合组织特异性启动子（如神经元Nestin启动子），解析基因在特定细胞类型中的作用。
药物交叉污染：处理组与对照组需分笼饲养，避免他mo昔芬通过粪便交叉诱导。
脱靶效应：部分Cre品系存在本底活性（如Cre-ERT2的泄露表达），需设置严格对照。
剂量优化：药物浓度和给药频率需根据动物年龄、品系调整，避免毒性。
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