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RSV动物模型构建

简要描述:呼吸道合胞病毒(Respiratory Syncytial Virus, RSV)是婴幼儿和老年人下呼吸道感染的重要病原体。构建RSV动物模型是研究其致病机制、免疫应答及疫苗/药物评价的关键手段

  • 更新时间:2025-06-24 13:40:37
  • 访  问  量:8

详细介绍

一、RSV动物模型构建实验动物选择

1. 常用动物及特点

动物模型优点缺点适用研究
BALB/c小鼠成本低、易操作、免疫应答明确需高剂量感染,病变较轻免疫机制、疫苗评价
C57BL/6小鼠Th1型免疫反应强对RSV敏感性较低免疫调节研究
棉鼠(Cotton Rat)高度敏感,可模拟人类病理商业来源有限疫苗保护效果
雪貂(Ferret)呼吸道生理接近人类成本高、饲养复杂传播模型
非人灵长类(如猕猴)接近人类免疫系统昂贵、伦理限制临床前研究

2. 选择依据

  • 研究目的

    • 免疫机制 → BALB/c小鼠(Th2偏向)

    • 药物/疫苗评价 → 棉鼠(病变明显)

    • 传播研究 → 雪貂

  • 病毒株适应性:人RSV(如A2株)在小鼠中需高剂量感染,而牛RSV(BRSV)在牛模型中更易致病。


二、RSV动物模型构建病毒株准备

1. 常用RSV毒株

  • 人RSV-A(如A2、Long株)

  • 人RSV-B(如B1、18537株)

  • 牛RSV(BRSV)(用于牛或棉鼠模型)

2. 病毒扩增与滴定

  • 细胞培养

    • 使用 HEp-2 或 Vero 细胞扩增RSV;

    • 37℃培养,观察CPE(细胞病变效应)。

  • 病毒纯化:超速离心去除细胞碎片。

  • 病毒滴度测定

    • 噬斑试验(Plaque Assay, PFU/mL)

    • TCID₅₀(组织培养感染剂量)


三、感染途径与剂量

1. 感染方式

途径方法适用模型特点
鼻腔接种麻醉后滴鼻(小鼠50μL)小鼠、棉鼠模拟自然感染
气管内接种手术或微创插管棉鼠、雪貂直接下呼吸道感染
气溶胶暴露雾化吸入雪貂、灵长类模拟空气传播

2. 感染剂量

  • 小鼠:10⁶–10⁷ PFU(BALB/c需较高剂量)

  • 棉鼠:10⁵–10⁶ PFU

  • 雪貂:10⁷ PFU


四、模型评估指标

1. 临床症状

  • 体重下降(>15%需考虑安乐si)

  • 呼吸频率增加、弓背、竖毛

  • 雪貂:咳嗽、鼻分泌物增多

2. 病毒学检测

  • 肺组织病毒载量(qPCR检测RSV-N或-F基因)

  • 鼻洗液/支气管肺泡灌洗液(BALF)病毒滴度(噬斑试验)

3. 病理学分析

  • 肺组织HE染色

    • 炎症细胞浸润(中性粒细胞、淋巴细胞)

    • 肺泡壁增厚、支气管上皮损伤

  • 免疫组化:检测RSV抗原分布

4. 免疫应答分析

  • 体液免疫:ELISA检测RSV特异性IgG/IgA

  • 细胞免疫

    • 流式检测CD4⁺/CD8⁺ T细胞

    • 细胞因子(IFN-γ、IL-4、IL-13)


五、注意事项

1. 生物安全

  • RSV需在 BSL-2 实验室操作。

  • 雪貂模型需防止交叉感染(RSV可通过接触/气溶胶传播)。

2. 动物福利

  • 设置 人道终点(如体重下降>20%、严重呼吸困难)。

  • 麻醉优化(异fu烷优于yi醚,减少刺激)。

3. 对照设置

  • 阴性对照:PBS或未感染组

  • 阳性对照:已知致病株(如RSV-A2)


六、常见问题与优化

1. 小鼠模型病变较轻

  • 解决方案

    • 使用 BALB/c 而非C57BL/6(更敏感)

    • 提高感染剂量(10⁷ PFU)

    • 联合 poly(I:C) 或 LPS 增强炎症

2. 免疫病理增强(疫苗增强性疾病)

  • 现象:某些RSV疫苗(如FI-RSV)可导致Th2型免疫病理。

  • 检测指标

    • 肺嗜酸性粒细胞浸润

    • IL-5、IL-13水平升高

3. 传播模型构建困难

  • 雪貂共饲养实验:感染与未感染动物混合饲养,监测接触传播。



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