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对比项 | CDX模型 | PDX模型 |
---|---|---|
细胞来源 | 肿瘤细胞系(如A549、HCT116) | 患者新鲜肿瘤组织 |
构建周期 | 2–6周 | 3–12个月 |
成本 | 低 | 高 |
应用场景 | 药物筛选、机制研究 | 个体化治疗、临床转化研究 |
细胞系选择:
肺癌:A549(非小细胞肺癌)、H1975(EGFR突变)
结直肠癌:HCT116、SW480
乳腺癌:MCF-7(ER+)、MDA-MB-231(三阴性)
常用细胞系(示例):
需定期STR鉴定,避免交叉污染。
细胞培养:
使用含10% FBS的培养基(如DMEM/RPMI-1640),传代至对数生长期。
胰m消化后计数,调整细胞浓度(通常1×10⁶–5×10⁶ cells/mL)。
免疫缺陷鼠:
裸鼠(BALB/c nude):T细胞缺陷,适合大多数实体瘤。
NSG(NOD-scid IL2Rγ⁻/⁻):高度免疫缺陷,适合低成瘤性细胞。
饲养环境:SPF级屏障系统,避免感染。
步骤:
麻醉小鼠(异f烷或腹腔注射戊巴b妥钠)。
背部或侧腹皮肤消毒(酒精+碘伏)。
皮下注射肿瘤细胞悬液(100–200 μL,含1×10⁶–5×10⁶ cells)。
观察注射部位是否形成明显皮丘(避免漏液)。
优点:操作简单,易于监测肿瘤体积。
示例:
肝癌:脾脏注射(细胞迁移至肝)。
肺癌:气管内注射或尾静脉注射(肺转移模型)。
乳腺癌:乳腺脂肪垫注射(4号乳头周围)。
优点:更接近临床病理特征,但手术难度较高。
注射1×10⁵–1×10⁶ cells(100 μL PBS),4–6周后解剖检测肺/肝转移灶。
肿瘤体积测量:
游标卡尺测量长径(L)和短径(W),按公式计算:
每周测量2–3次,体积达1000–1500 mm³时需终止实验(伦理限制)。
终点指标:
肿瘤重量:解剖后称重。
组织学分析:H&E染色、Ki-67(增殖)、TUNEL(凋亡)。
分子检测:qPCR/WB检测靶基因表达。
分组设计:对照组(PBS)、实验组(化疗药/靶向药)。
评价指标:抑瘤率()、生存期。
构建稳定敲除/过表达细胞系(如CRISPR-Cas9),比较成瘤能力差异。
共移植人PBMC或免疫检查点抑制剂(如抗PD-1抗体)。
问题 | 可能原因 | 解决方案 |
---|---|---|
肿瘤不成瘤 | 细胞活性低/接种量不足 | 提高细胞数(5×10⁶ cells),改用NSG小鼠 |
肿瘤生长不均匀 | 注射技术不稳定 | 统一由同一操作者注射,避免气泡 |
动物死亡或感染 | 手术创伤/无菌操作不当 | 术后抗生素预防(如恩n沙星) |
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